产品介绍
产品货号:D4007
产品规格:10 mg
应用范围:细胞膜荧光染料,主要用于细胞成像,细胞示踪和追踪
产品参数
外观:黄色固体。DiO溶于无水乙醇、无水DMSO和无水DMF,在无水DMSO中的溶解度约为10 mg/mL。较难溶解时,可以适当加热或者超声处理。
Ex/Em (MeOH) = 484/501 nm
CAS号:34215-57-1
分子式:C53H85ClN2O6
分子量:881.7
分子结构图:
储存条件:4℃避光保存,有效期见外包装。
4℃避光保存,有效期见外包装。
产品介绍
DiO即DiOC18(3),是最常用的细胞膜荧光探针之一,呈现绿色荧光。DiO是一种亲脂性膜染料,进入细胞膜后可以侧向扩散逐渐染色整个细胞的细胞膜。DiO在进入细胞膜之前荧光非常弱,当与细胞膜结合后其荧光强度大大增强,被激发后可以发出绿色荧光,具有很高的淬灭常数和激发态寿命,可以用标准的FITC滤光片检测。
DiO作为示踪剂或长期示踪剂,被广泛用于正向或逆向的,活的或固定的神经等细胞或组织。DiO通常不会显著影响细胞的生存力。
DiO除了细胞膜荧光标记外,还可用于检测细胞的融合和粘附,发育或移植过程中的细胞迁移,通过FRAP(光脱色荧光恢复技术)检测脂在细胞膜上的扩散,检测细胞毒性和标记脂蛋白等。
DiO染色后可进行多聚甲醛(不可使用甲醇等其他试剂)的固定,但不建议在染色后进行透化的过程。此外,在固定透化(室温下用0.1% TritonX-100 透化)后,也可以很好地进行质膜染色。DiO染色强度通常低于DiI,有时在固定组织中会完全丧失。
以每次使用100 μL染色工作液,染色工作液浓度10 μM计算,10 mg配置为工作液大概可以用11341次。
使用方法
1. 染色液制备
(1)配制储液:储液用无水DMSO、无水DMF或EtOH配制,浓度1~5 mM。DiO在无水DMSO和无水DMF中的溶解度比在EtOH中的溶解度高。
注:a.未使用的储存液分装储存在-20℃,避免反复冻融;
b.发现较难溶解时可以适当加热,并用超声处理以促进溶解。
(2)工作液制备:用合适的缓冲液(如:无血清培养基,HBSS或PBS)稀释储液,配制浓度为1~30 μM的工作液。最常用的工作液浓度为5-10 μM。
注:工作液最终浓度建议根据不同细胞系和实验体系来优化。建议从推荐浓度的10倍范围内开始最优浓度的摸索。
2. 悬浮细胞染色
(1)加入适当体积的染色工作液重悬细胞,使其密度为1×106/mL。
(2)37℃孵育细胞2~20 min,不同的细胞最佳培养时间不同。可以20 min作为起始孵育时间,之后优化体系以得到均一的标记效果。
(3)孵育结束,1000~1500 rpm离心5 min。倾倒上清液,再次缓慢加入37℃预热的生长培养液重悬细胞。
(4)重复步骤(3)两次以上。
3. 贴壁细胞染色
(1)将贴壁细胞培养于无菌盖玻片上。
(2)从培养基中移走盖玻片,吸走过量培养液,但要使表面保持湿润。
(3)在盖玻片的一角加入100 μL的染料工作液,轻轻晃动使染料均匀覆盖所有细胞。
(4)37℃孵育细胞2~20 min,不同的细胞最佳培养时间不同。可以20 min作为起始孵育时间,之后优化体系以得到均一的标记效果。
(5)吸干染料工作液,用培养液洗盖玻片2~3次,每次用预温的培养基覆盖所有细胞,孵育5~10 min,然后吸干培养基。但要使表面保持湿润。
4. 结果检测
样品可在培养基中进行检测,可通过荧光显微镜成像或流式细胞仪分析。
注意事项
1. 使用前请将产品瞬时离心至管底,再进行后续实验。
2. DiO染色固定的细胞或组织样品时,通常使用配制在PBS中的4%多聚甲醛进行固定,使用其它不适当的固定液会导致荧光背景较高。
3. 荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。
4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。