（4）单通道移液器：200 μL、1000 μL

（5）漩涡振荡器

（6）垂直混合仪

（7）恒温金属浴或水浴锅

（8）磁性分离器

2.操作步骤（以400 μL样本量为例）

（1）唾液样本裂解

a.向1.5 mL离心管中加入400 μL唾液样本（若样本体积不足400 μL，请加入唾液保存液补齐至400 μL）、20μL蛋白酶K溶液、以及200 μL裂解液，涡旋混匀。

注意：裂解液低温情况下可能出现沉淀，可于37℃加热2 min融化。

b.将离心管与55℃温浴10 min，期间每隔5 min摇晃混均一次，完毕后低速瞬离使管盖以及管壁上液体集中到官底，待用。

（2）结合：向上述离心管中加入350 μL异丙醇，再加入50 μL磁珠悬液，涡旋震荡3 min混匀后静置2 min。

（3）磁性分离：将离心管置于磁力架上静置20 s至磁珠吸附完全；如果离心管内盖有磁珠，可保持EP管在磁力架上，整体上下颠倒2-3次至磁珠完全吸附。保持EP管固定于磁力架上，用移液枪吸弃上清液，期间避免接触磁珠。

（4）洗涤1：向1.5mL离心管中加入800 μL洗涤液I，将1.5mL离心管从磁力架上取下，用移液枪吹散磁珠，涡旋震荡2 min，磁性分离（参照步骤3）操作），再重复此操作1次。

（5）洗涤2：使用800 μL洗涤液II，（参照步骤（4）操作）。

（6）干燥：保持离心管于磁性分离器上，于是室温下开盖静置10 min后，取下离心管。

注意：干燥过程中若发现反应管中有液体残留时，可用小量程移液器吸弃液体。

7）洗脱：加入100 μL洗脱液 ，涡旋震荡1 min或用移液器缓慢 吹打磁珠50次，使磁珠充分悬浮，于65℃加热10 min后，将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清，转移上清液至新的1.5 mL离心管中，此即为纯化得到的唾液DNA，可保存于-20℃。

二、自动化操作流程

可以适配市面上大部分品牌核酸提取仪，详细参数请联系我司技术支持或设备厂商技术支持。

注意事项

1.操作之前，请务必认真阅读本产品手册。

2.唾液样品的质量对产物DNA的纯化量有较大影响，应避免反复冻融唾液样品。

3.蛋白酶K干粉溶解后，可分装储存于-20℃，但应避免反复冻融。

4.应避免对磁珠进行冷冻、离心等操作。

5.磁珠取用前应充分重悬均匀。

6.磁珠干燥前，应使用移液器吸尽洗涤液。

7.应避免磁珠过度干燥，否则会严重降低核酸洗脱效率。

8.建议使用质量较好的离心管和移液器吸头，避免因粘附磁珠而造成损失。

9.在96孔板中进行磁性分离操作时，磁珠吸附时间可适当延长。

10.使用前请检查各组分是否存在析出情况，如有析出，请将试剂瓶置于60℃水浴加热溶解后使用。